{"id":303,"date":"2026-04-15T10:49:43","date_gmt":"2026-04-15T13:49:43","guid":{"rendered":"https:\/\/wp.ufpel.edu.br\/genestrut\/?p=303"},"modified":"2026-04-16T00:00:40","modified_gmt":"2026-04-16T03:00:40","slug":"ufpel-passa-a-figurar-entre-instituicoes-com-capacidade-de-edicao-genomica-de-animais","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/wp.ufpel.edu.br\/genestrut\/2026\/04\/15\/ufpel-passa-a-figurar-entre-instituicoes-com-capacidade-de-edicao-genomica-de-animais\/","title":{"rendered":"UFPel passa a figurar entre institui\u00e7\u00f5es com capacidade de edi\u00e7\u00e3o gen\u00f4mica de animais"},"content":{"rendered":"

O Laborat\u00f3rio de Gen\u00f4mica Estrutural (GenEstrut) da Universidade Federal de Pelotas (UFPel), coordenado pelos professores Vinicius Farias Campos, Mariana Remi\u00e3o e Tony Silveira, reporta a gera\u00e7\u00e3o dos primeiros modelos de zebrafish (Danio rerio<\/em>) geneticamente editados por CRISPR-Cas9 no \u00e2mbito institucional, estabelecendo um novo patamar de capacidade experimental em gen\u00f4mica funcional de vertebrados.<\/p>\n

O avan\u00e7o marca uma transi\u00e7\u00e3o clara: da an\u00e1lise molecular para a engenharia gen\u00e9tica de sistemas biol\u00f3gicos. A partir deste momento, a UFPel n\u00e3o apenas investiga processos biol\u00f3gicos \u2014 passa a constru\u00ed-los de forma controlada, com precis\u00e3o gen\u00e9tica e reprodutibilidade, a partir da integra\u00e7\u00e3o entre edi\u00e7\u00e3o gen\u00f4mica e produ\u00e7\u00e3o de biomodelos.<\/p>\n

Gera\u00e7\u00e3o e estabiliza\u00e7\u00e3o de uma linhagem knockout do gene inhbaa<\/em><\/strong><\/p>\n

O primeiro modelo desenvolvido corresponde \u00e0 inativa\u00e7\u00e3o do gene inhbaa<\/em>, membro da superfam\u00edlia TGF-\u03b2, associado a processos regenerativos em vertebrados. A edi\u00e7\u00e3o foi realizada por CRISPR-Cas9 no exon 2, resultando em uma inser\u00e7\u00e3o de 5 pares de bases (+5bp), que provoca mudan\u00e7a no quadro de leitura (frameshift) e introduz um c\u00f3don de parada prematuro, levando \u00e0 perda funcional da prote\u00edna. Esse modelo estabelece um sistema gen\u00e9tico definido para investiga\u00e7\u00e3o da fun\u00e7\u00e3o do Activin-\u03b2A e dos mecanismos de compensa\u00e7\u00e3o gen\u00e9tica em vertebrados.<\/p>\n

A gera\u00e7\u00e3o do modelo foi oriunda da Tese de Doutorado em Biotecnologia na UFPel do Dr. Leandro Silva Nunes, orientado pelo Prof. Vinicius Campos e a tese por sua vez foi financiada com recursos da FAPERGS atrav\u00e9s de um projeto de colabora\u00e7\u00e3o do edital FAPERGS-FAPESP coordenado pelo Prof. Vinicius na UFPel e pelo Prof. Danillo Pinhal na UNESP e contou com parceria da FURG atrav\u00e9s do Prof. Luis Fernando Marins.<\/p>\n

Regenera\u00e7\u00e3o: um problema de regula\u00e7\u00e3o, n\u00e3o de genes<\/strong><\/p>\n

A relev\u00e2ncia do modelo inhbaa<\/em> ultrapassa a an\u00e1lise de um \u00fanico gene. Ele se insere em uma das quest\u00f5es centrais da biologia contempor\u00e2nea: porque alguns organismos regeneram tecidos complexos \u2014 como o cora\u00e7\u00e3o \u2014 enquanto outros, como os humanos, n\u00e3o.<\/p>\n

As evid\u00eancias indicam que os genes envolvidos na regenera\u00e7\u00e3o est\u00e3o presentes em diferentes vertebrados. A diferen\u00e7a est\u00e1 na regula\u00e7\u00e3o: no momento, intensidade e contexto em que esses genes s\u00e3o ativados ap\u00f3s uma les\u00e3o.<\/p>\n

A linhagem knockout de inhbaa<\/em> permite investigar diretamente essa l\u00f3gica regulat\u00f3ria, especialmente em contextos de dano tecidual, onde a fun\u00e7\u00e3o desse gene se torna determinante.<\/p>\n

Edi\u00e7\u00e3o do gene slc45a2<\/em> e o estabelecimento de um modelo de visualiza\u00e7\u00e3o<\/strong><\/p>\n

Paralelamente ao modelo funcional, foi desenvolvido um segundo sistema baseado na edi\u00e7\u00e3o do gene slc45a2<\/em>, direcionado ao exon 1. Esse gene est\u00e1 diretamente envolvido na s\u00edntese de melanina. Sua inativa\u00e7\u00e3o resultou em animais com forte redu\u00e7\u00e3o de pigmenta\u00e7\u00e3o, apresentando fen\u00f3tipo claro ou transl\u00facido.<\/p>\n

A gera\u00e7\u00e3o desse modelo foi realizada no contexto de projeto financiado pelo Conselho Nacional de Desenvolvimento Cient\u00edfico e Tecnol\u00f3gico (CNPq), no \u00e2mbito do curso do Centro Argentino-Brasileiro de Biotecnologia (CABBIO), intitulado \u201cBiomodelos em Biotecnologia Gen\u00f4mica: integrando sa\u00fade humana, animal, ambiental e empreendedorismo<\/em>\u201d, coordenado pelo Prof. Vinicius Farias Campos. O curso foi realizado em 2025 e contou com a participa\u00e7\u00e3o de pesquisadores e estudantes de sete pa\u00edses da Am\u00e9rica Latina, contribuindo de forma decisiva para a forma\u00e7\u00e3o pr\u00e1tica em edi\u00e7\u00e3o gen\u00f4mica e para a consolida\u00e7\u00e3o dessa capacidade na UFPel.<\/p>\n

Diferentemente do modelo inhbaa<\/em>, cujos efeitos s\u00e3o predominantemente funcionais, o fen\u00f3tipo associado ao slc45a2<\/em> \u00e9 imediatamente vis\u00edvel, funcionando como marcador direto da efici\u00eancia da edi\u00e7\u00e3o gen\u00f4mica.<\/p>\n

Al\u00e9m disso, esse modelo amplia significativamente as possibilidades experimentais, permitindo a visualiza\u00e7\u00e3o facilitada de estruturas internas in vivo<\/em>, aplica\u00e7\u00f5es em estudos de desenvolvimento embrion\u00e1rio, an\u00e1lises de migra\u00e7\u00e3o celular e forma\u00e7\u00e3o de tecidos, bem como integra\u00e7\u00e3o com sistemas fluorescentes (Figura 1 e 2).<\/p>\n

Nesse contexto, o organismo deixa de ser apenas objeto de an\u00e1lise indireta e passa a se tornar uma plataforma de observa\u00e7\u00e3o direta dos processos biol\u00f3gicos.<\/p>\n

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Figura 1. Embri\u00f5es de zebrafish editados por CRISPR-Cas9.<\/strong> Imagem representativa de embri\u00f5es em est\u00e1gio inicial de desenvolvimento, incluindo indiv\u00edduos editados no gene slc45a2<\/em>, caracterizados pela aus\u00eancia ou redu\u00e7\u00e3o de pigmenta\u00e7\u00e3o, resultando em fen\u00f3tipo transl\u00facido, em contraste com embri\u00f5es com pigmenta\u00e7\u00e3o preservada. O modelo permite a visualiza\u00e7\u00e3o facilitada de estruturas internas e serve como marcador fenot\u00edpico da efici\u00eancia da edi\u00e7\u00e3o gen\u00f4mica.<\/p>\n

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Figura 2. Compara\u00e7\u00e3o entre zebrafish wild-type e editado no gene slc45a2<\/em>.<\/strong> Indiv\u00edduo com pigmenta\u00e7\u00e3o preservada (direita) em contraste com exemplar editado apresentando redu\u00e7\u00e3o de melanina (esquerda), resultando em fen\u00f3tipo claro\/transl\u00facido. A diferen\u00e7a fenot\u00edpica evidencia a efici\u00eancia da edi\u00e7\u00e3o gen\u00f4mica e refor\u00e7a o potencial do modelo para aplica\u00e7\u00f5es em visualiza\u00e7\u00e3o in vivo e estudos funcionais.<\/p>\n

Biot\u00e9rio de Biomodelos Aqu\u00e1ticos: infraestrutura certificada para edi\u00e7\u00e3o gen\u00f4mica<\/strong><\/p>\n

A consolida\u00e7\u00e3o da edi\u00e7\u00e3o gen\u00f4mica em zebrafish na UFPel \u00e9 sustentada pela infraestrutura do Biot\u00e9rio de Biomodelos Aqu\u00e1ticos, coordenado pelo Prof. Tony Silveira e Mariana Remi\u00e3o, em articula\u00e7\u00e3o com o GenEstrut. O biot\u00e9rio disp\u00f5e de condi\u00e7\u00f5es t\u00e9cnicas e regulat\u00f3rias adequadas para todas as etapas envolvidas na gera\u00e7\u00e3o e manuten\u00e7\u00e3o de organismos geneticamente editados, incluindo sistemas de aqu\u00e1rios com controle ambiental rigoroso, manejo reprodutivo, cultivo de embri\u00f5es e suporte \u00e0s etapas de microinje\u00e7\u00e3o e triagem.<\/p>\n

Do ponto de vista regulat\u00f3rio, a estrutura conta com Certificado de Qualidade em Biosseguran\u00e7a (CQB), habilitando a institui\u00e7\u00e3o a realizar atividades envolvendo organismos geneticamente modificados (OGMs), incluindo edi\u00e7\u00e3o gen\u00f4mica por CRISPR-Cas9, em conformidade com as normas da Comiss\u00e3o T\u00e9cnica Nacional de Biosseguran\u00e7a (CTNBio).<\/p>\n

Essa certifica\u00e7\u00e3o assegura que os procedimentos de edi\u00e7\u00e3o, cria\u00e7\u00e3o e manuten\u00e7\u00e3o das linhagens seguem padr\u00f5es de biosseguran\u00e7a, rastreabilidade e controle exigidos para pesquisa e desenvolvimento com OGMs.<\/p>\n

A integra\u00e7\u00e3o entre infraestrutura f\u00edsica, certifica\u00e7\u00e3o regulat\u00f3ria e capacidade t\u00e9cnica permite ao biot\u00e9rio operar como uma plataforma cont\u00ednua de gera\u00e7\u00e3o, estabiliza\u00e7\u00e3o e disponibiliza\u00e7\u00e3o de biomodelos aqu\u00e1ticos, sustentando tanto projetos de pesquisa quanto iniciativas de inova\u00e7\u00e3o tecnol\u00f3gica.<\/p>\n

\u00a0<\/strong>Cria\u00e7\u00e3o da Tetiz Biomodelos \u2013 inova\u00e7\u00e3o como foco<\/strong><\/p>\n

Fundada pelos p\u00f3s-doutorandos do GenEstrut Dra. Amanda Weege da Silveria Martins e Dr. Leandro Silva Nunes, como desdobramento direto dessa capacidade integrada, foi criada a startup Tetiz Biomodelos, com o objetivo de produzir e fornecer modelos de zebrafish editados por CRISPR em n\u00edvel nacional.<\/p>\n

A iniciativa responde a uma lacuna estrutural do sistema cient\u00edfico brasileiro, ainda dependente da importa\u00e7\u00e3o de biomodelos, o que implica altos custos, longos prazos e baixa flexibilidade experimental.<\/p>\n

A Tetiz Biomodelos<\/a>\u00a0se prop\u00f5e a oferecer:<\/p>\n